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外显子

2025-07-14
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外显子(Exon)是真核生物基因中编码蛋白质的区域,在基因表达过程中会被保留并最终翻译成蛋白质。外显子与内含子(Intron)交替排列在基因中,在转录后加工过程中,内含子被切除,外显子则连接在一起形成成熟的mRNA。外显子的发现是基因结构研究的重要突破,为理解基因表达调控、蛋白质多样性和遗传疾病机制提供了基础。

发现历程

1977年 - 断裂基因的发现

Richard J. Roberts和Phillip A. Sharp各自独立发现腺病毒基因中存在不连续的编码区域,即基因由外显子和内含子组成,这一发现颠覆了此前认为基因是连续编码序列的认知。

1993年 - 诺贝尔奖

Richard J. Roberts和Phillip A. Sharp因发现断裂基因(外显子和内含子)获得诺贝尔生理学或医学奖。

后续研究

随着基因组测序技术的发展,对不同物种外显子结构和功能的研究不断深入,发现了选择性剪接等重要机制,揭示了外显子在生物进化和功能多样性中的关键作用。

结构与功能

基因结构中的位置

外显子是真核生物基因中的编码区域,被非编码的内含子分隔。一个基因通常由多个外显子和内含子交替组成,基因两端的外显子可能包含非翻译区(UTR)。

转录与剪接

基因转录时,外显子和内含子均被转录成前体mRNA(pre-mRNA)。在剪接过程中,内含子被切除,外显子按顺序连接形成成熟的mRNA,随后被翻译成蛋白质。

密码子与蛋白质编码

外显子中的核苷酸序列以三联体密码子的形式编码氨基酸。起始密码子(通常为AUG)和终止密码子(UAA、UAG或UGA)定义了翻译的起始和终止位置。

选择性剪接

许多基因的外显子可以通过选择性剪接(Alternative Splicing)以不同方式组合,产生多种mRNA异构体,从而增加蛋白质组的复杂性和功能多样性。据估计,约95%的人类多外显子基因发生选择性剪接。

外显子类型

编码外显子

直接编码蛋白质氨基酸序列的外显子,包含开放阅读框(ORF)。

非编码外显子

位于基因5'或3'端,不编码氨基酸,但可能包含调控元件或非翻译区(UTR),影响mRNA的稳定性、翻译效率或亚细胞定位。

组成型外显子

在所有成熟mRNA转录本中均被保留的外显子,对蛋白质的基本功能至关重要。

选择性外显子

通过选择性剪接机制,在不同组织、发育阶段或环境条件下被选择性包含或排除的外显子,是蛋白质多样性的重要来源。

研究技术

外显子组测序(WES)

选择性捕获和测序基因组中的外显子区域,是一种高效且经济的基因分析方法,广泛用于遗传病和癌症相关基因的突变检测。

RNA测序(RNA-seq)

分析转录组中的RNA序列,可鉴定外显子边界、检测选择性剪接事件,并定量不同外显子异构体的表达水平。

剪接位点预测

利用生物信息学方法预测基因组中的外显子-内含子边界和剪接位点,辅助基因注释和功能分析。

功能验证实验

通过基因编辑(如CRISPR/Cas9)、报告基因分析等方法验证外显子功能和剪接调控机制。

生物学意义

蛋白质多样性

  • 选择性剪接:同一基因通过不同外显子组合产生多种蛋白质异构体
  • 外显子重排:外显子的不同排列组合增加蛋白质结构和功能的多样性
  • 结构域 shuffling:外显子编码的蛋白质结构域可以重组,形成新的功能

基因表达调控

  • 外显子中的调控元件:如增强子、沉默子等影响基因表达水平
  • 非编码外显子:参与mRNA稳定性、翻译效率和亚细胞定位的调控
  • 选择性剪接调控:响应细胞信号和环境变化,动态调节蛋白质表达

进化意义

  • 外显子洗牌(Exon shuffling):通过重组产生新的基因组合,促进进化
  • 保守外显子:不同物种中高度保守的外显子反映功能重要性
  • 新外显子的产生:通过转座子插入、基因组重排等机制产生新功能

疾病关联

  • 剪接突变:外显子或剪接位点的突变可导致异常剪接,引发遗传病
  • 癌症相关剪接变异:肿瘤中常见异常剪接事件,产生促癌蛋白
  • 药物靶点:选择性剪接产物可作为药物开发的特异性靶点

与疾病的关系

遗传病

约15-20%的遗传病由剪接位点突变引起,导致外显子跳过或内含子保留,产生截短或功能异常的蛋白质。例如,β-地中海贫血、囊性纤维化等。

癌症

癌细胞中常出现异常剪接事件,导致促癌蛋白的产生或抑癌蛋白的失活。例如,乳腺癌中的BCL2L1、前列腺癌中的AR基因等均存在剪接变异。

神经系统疾病

许多神经系统疾病与剪接调控异常有关,如脊髓性肌萎缩症(SMA)由SMN1基因外显子7的异常剪接引起。

药物开发

针对异常剪接事件的药物开发是当前研究热点,如反义寡核苷酸药物Nusinersen通过调控SMN2基因的剪接治疗SMA。

经典文献

  • 1. Berget SM, Moore C, Sharp PA. Spliced segments at the 5' terminus of adenovirus 2 late mRNA. Proc Natl Acad Sci U S A. 1977;74(8):3171-3175.
  • 2. Chow LT, Gelinas RE, Broker TR, Roberts RJ. An amazing sequence arrangement at the 5' ends of adenovirus 2 messenger RNA. Cell. 1977;12(1):1-8.
  • 3. Black DL. Mechanisms of alternative pre-messenger RNA splicing. Annu Rev Biochem. 2003;72:291-336.
  • 4. Wang ET, Sandberg R, Luo S, et al. Alternative isoform regulation in human tissue transcriptomes. Nature. 2008;456(7221):470-476.
  • 5. Keren H, Lev-Maor G, Ast G. Alternative splicing and evolution: diversification, exon definition and function. Nat Rev Genet. 2010;11(5):345-355.
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